на очевидное удобство этого способа, следует заметить, что оптимальное время обработки необходимо выверять для каждого используемого прибора отдельно, поскольку невозможно контролировать время прогрева сосуда с предметными стеклами до рабочей температуры, которое зависит от мощности и устройства конкретного прибора, а также от объема нагреваемой жидкости. Лучшей стандартизации можно добиться, помещая препараты в уже подогретый буфер, однако применение этого подхода делает методику более трудоемкой.
В патологоанатомической практике наибольшее применение находит демаскирование в скороварке (Bancroft J. D. [et al.], 2002). Для работы со скороваркой необходим достаточно большой объем буферного раствора (3 л буфера для скороварки вместимостью 5 л). Такие объемы делают процедуру достаточно дорогостоящей, если только буферный раствор не готовят самостоятельно сотрудники лаборатории.
Предметные стекла в металлическом держателе помещают на дно скороварки, закрывают крышку и начинают нагрев. Время обработки начинают отсчитывать после достижения рабочего давления. Для большинства антигенов оно составляет около 2 мин. Скороварка достаточного объема позволяет одновременно обрабатывать до 25 препаратов.
Следует заметить, что существуют антигены, которые разрушаются при тепловом демаскировании (например, эпитоп ламинина, выявляемый моноклональными мышиными антителами 4С7).
Для срезов, полученных с объектов, фиксированных в коагулирующих фиксаторах и в фиксирующих жидкостях сложного состава, эффект теплового демаскирования не столь очевиден, как для материала, фиксированного в формалине и цинк-формалине. В отдельных случаях использование высокочувствительных систем детекции позволяет обойтись без теплового демаскирования и получить результаты высокого качества с меньшими временными затратами. Если есть подозрение, что фиксация объектов производилась не в оптимальном режиме (длительная фиксация в растворе формалина, приготовленного «на глаз», и т. п.), обязательно тепловое демаскирование.
Эффективность процедуры теплового демаскирования антигенов удобно контролировать, параллельно с изучаемой серией предметных стекол производя обработку положительного контроля, в котором имеются пролиферирующие клетки (любой лимфатический узел и т. п.). После демаскирования на этом препарате необходимо поставить реакцию, выявляющую пролиферативный маркер – антиген Ki-67. Для его определения следует использовать моноклональные антитела MIB-1 (ткани человека) и MIB-5 (ткани крысы). В случае, когда демаскировка антигенов проведена неправильно, пролиферативные маркеры в положительном контроле не будут обнаружены. Наш опыт показывает, что для оценки эффективности демаскирования подходящим антигеном является виментин (Кирик О. В. [и др.], 2012). Особенно удобно использовать при этом моноклональные мышиные антитела клона V9 и учитывать эффективность демаскирования виментина в составе эндотелия